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Examen PRÁCTICO laboratorio Flashcards

(79 cards)

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1
Q

Pasos de la tinción de gram: (10)

A
  1. Gota de agua + bacteria (diluir) = fijar con mechero
  2. Tinción CRISTAL VIOLETA (1min)
  3. Enguajar
  4. Tinción YODO (1min)
  5. Enguajar
  6. Limpiar ALCOHOL ETÍLICO 95% (10-15 seg)
  7. enguajar
  8. Tinción SAFRANINA (1min)
  9. enguajar
  10. secar
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Q

¿Qué tiñe la tinción de gram?

A

Pared de peptidoglicanos de las bacterias

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3
Q

¿Qué tiñe la tinción de wirtz-conklin?

A

Endoesporas bacterianas

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4
Q

Pasos de la tinción de wirtz-conklin: (7)

A
  1. fijar muestra
  2. tinción VERDE MALAQUITA 5%
  3. colocar papel filtro y secar a mechero (5 min)
  4. enguajar
  5. tinción SAFRANINA 1% (1 min)
  6. enjuagar
  7. seca
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5
Q

Color de las endoesporas en Wirtz-conklin:

A

verde (malaquita)

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6
Q

Color de las células en wirtz-conklin:

A

Rosa (safranina)

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7
Q

Función del agar nutritivo

A

bacterias que no requieren de condiciones nutricionales especiales (amplia gama)

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8
Q

Composición del agar nutritivo (1)

A

Caldo nutritivo (cerebro, corazón, etc)

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9
Q

Función del agar MacConkey: (selectivo y diferencial)

A

SELECTIVO: aislamiento de enterobacterias y BGN entéricos
DIFERENCIAL: fermentadoras / no fermentadoras de lactosa (rojo neutro = rojo)

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10
Q

Composición del agar MacConkey (4)

A

Sales biliares/Cristal violeta
lactosa
Cloruro de sodio
(rojo neutro = rojo)

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11
Q

Bacterias que crecen en Agar McConkey y fermentación: (6)

A

Fermentadoras (ROJO): E. coli (intensa), Kliebsiella pneumoniae (mucosas), enterobacterias.
NO fermentadoras (AMARILLO): Salmonella, shigella y proteus.

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12
Q

Función del agar sal y manitol: (selectivo y diferencial)

A

SELECTIVO: Staphilococcos spp.
DIFERENCIAL: (Fermentación de manitol)
* PATOGÉNICOS: colonias amarillas
* NO patogénicos: colonias rosas

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13
Q

Composición del agar sal y manitol: (3)

A

Manitol: fuente de carbono
Sal: inhibe crecimiento bacteriano
(rojo fenol = amarillo)

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14
Q

Función del agar sangre de carnero: (DIFERENCIAL)

A

Medio enriquecido; Permite visualizar actividad HEMOLÍTICA
(alfa, beta, gamma)

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15
Q

Composición del agar sangre: (2)

A

Base enriquecida + 5% sangre
(peptonas, aa, vit, extracto de carne, NaCl, agar)

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16
Q

Bacterias que muestran cada uno de los tipos hemolíticos: (7)

A

Alfa hemólisis = S. Pneumoniae, S. viridans
Beta hemólisis = S. agalactie, S. pyogens, S. aureus
Gamma hemólisis = Enterococco fecalis y staph coagulasa negativos

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17
Q

Función agar chocolate:

A

Medio enriquecido; Crecimiento de organismos difíciles o exigentes

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18
Q

Composición del agar chocolate: (2)

A

Eritrocitos lisados (calentados) + Factor X y V de la coagulación.

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19
Q

Función agar Muller Hinton:

A

Medio enriquecido (almidón y carne de res), sensibilidad y resistencia a Ab de bacterias (antibiograma).

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20
Q

Composición del agar Muller Hinton: (3)

A

Extracto de carne de res
Hidrolizado de caseína
Almidon y agar

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21
Q

Función del agar EMB (Eosin Methylene Blue) (selectivo y diferencial) (5)

A

SELECTIVO: enterobacterias (BGN)
DIFERENCIAL: fermentadores y no fermentadores de lactosa
Fuertes = verde metálico
Medio = violeta
Débil = transpartente

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22
Q

Composición del agar EMB: (3)

A

Eosina y azul de metileno (inhiben BGP) + lactosa

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23
Q

Bacterias que crecen en EMB y fermentación: (Fuerte, media, débil)

A

Fermentación FUERTE (Verde metálico) = E. coli
Fermentación MEDIA (Violeta) = klebsiella pneumoniae y enterobacter
Fermentación DÉBIL (Transparentes) = Salmonella, shigella y proteus.

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24
Q

Función del agar XLD: (diferencial y selectivo)

A

SELECTIVO: salmonella, shigella y escherichia
DIFERENCIAL: (rojo fenol = amarillo)
rosa pálido = NO fermentadoras
negro = producen ácido sulfhídrico
amarillo = fermentadoras de lactosa

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25
Composición del agar XLD: (4)
**Carbohidratos (levaduras)**: xilosa, sacarosa y lactosa **sales biliares y desoxicolato de sodio**: inhibe enterobacterias, BGP **lisina** = relentizar fermentación de salmonella **Tiosulfato de sodio y citrato férrico de amonio** = ácido sulfhídrico (H2S)
26
Bacterias que crecen en Agar XLD y cómo se ven:
Shigella: NO fermentadora (rojo) NO H2S (transparente) Salmonella: NO fermentadora (roja) produce H2S (NEGRA) Fermentadoras (amarillo): E. coli y enterobacter
27
Función medio Kliger c/ hierro: (3)
Fermentadores/NO **fermentadores de lactosa** (ROJO FENOL = AMARILLO) Productores de **ácido sulfhídrico** (tiosulfato de sodio) = NEGRO Producción de gas = **BURBUJAS**
28
¿Donde se encuentra la glucosa en medio Kliger?
Fondo
29
¿Dónde se encuentra la lactosa en medio Kliger?
Superficie
30
Significado del color amarillo en medio Kliger:
SI FERMENTACIÓN (pH ácido)
31
Significado del color rojo en medio Kliger:
NO FERMENTACIÓN (pH alcalino)
32
¿Cómo se siembra en el agar Kliger c/hierro? (2)
Picadura + estria en pico de flauta
33
Función agar SIM: (3)
**movilidad**: línea marcada o difusa producción de **ácido sulfídrico** (tiosulfato de sodio) = NEGRO Producción de **indol** (triprofano + triptofanasa) = LÍNEA ROSA (reactivo con grupos aldehído)
34
¿Cómo se siembra en el medio SIM? (1)
Picadura
35
Bacterias que crecen en medio SIM: (indol, H2S y movilidad)
H2S: Salmonella y proteus Indol: E. coli, proteus, aeromonas Movilidad: E. coli, salmonella y proteus
36
Función del medio citrato de simmons (3)
**Fosfato de amonio** (única fuente de N) **Citrato de sodio** = produce cabronatos y bicarbonatos *ALCALINOS* = ÚNICA FUENTE DE ENERGÍA (VERDE = **AZUL DE BROMOTIMOL**)
37
Bacterias que crecen en citrato de Simmons y son positivas (azul): (7)
Salmonella * Citrobacter * Klebsiella * Enterobacter * Serratia * Proteus * Providencia
38
¿Cómo se siembra en el medio citrato de simmons?
Estría en pico de flauta
39
Función del medio UREA:
urea + **ureasa** = amoniaco y dióxido de carbono (AMARILLO = ROSA) aumenta pH (*rojo* *fenol*)
40
¿Cómo se siembra en el medio UREA?
estría en pico de flauta
41
Bacterias que crecen en medio UREA y son positivas (rosas):
Citrobacter +/- * Klebsiella * Proteus * Morganella * Providencia
42
Sistema estandarizado y más rápido que se utiliza actualmente para identificar bacterias en hospitalización:
Sistema API
43
Tipos de siembra en agar: (3)
Placa vertida Estria cruzada en placa Masiva
44
Función de la estria cruzada:
Aislar microorgnaismos individuales a partir de una muestra mixta
45
Función de la siembra masiva:
obtener crecimiento abundante y uniforme de microorganismos
46
Función de la placa vertida:
Recuento de colonias
47
Fases de la curva de crecimiento bacteriano: (4)
Fase de latencia Fase exponencial Fase estacionaria Fase de muerte
48
¿Qué sucede en la fase de LATENCIA?
Adaptación, NO crecimiento.
49
¿Qué sucede en la fase EXPONENCIAL? y tinción ideal (2)
Crecimiento MÁXIMO y constante Tinción de gram (paredes celulares intactas)
50
¿Qué sucede en la fase ESTACIONARIA? Tinción ideal? (2)
Crecimiento se detiene (agotamiento de nutrientes, acumulación de desechos) Tinción de Wirtz-Conklin (endoesporas)
51
¿Qué sucede en la fase de muerte?
Población de bacterias disminuye (muere)
52
Situaciones en las que se hacen antibiogramas: (4)
Infecciones graves Infecciones recurrentes Infecciones asociadasa a bacterias multirresistentes Pacientes IC
53
Función del antibiograma:
Evaluar respuesta a uno o varios Ab
54
Pasos para realizar un Antibiograma (disco Kirby-Bauer): (5)
1. Seleccionar una bacteria 2. Hacer una SIEMBRA MASIVA con un hisopo estéril en el medio mueller-hinton 3. Esperar 5 minutos 4. Colocar el multidisco con antibióticos 5. Interpretación de 24-48hrs
55
¿Cómo se interpreta la sensibilidad a Antibióticos del antibiograma? (3) (RADIO/DIÁMETRO)
Sensible: ≥ 18 mm Intermedio: 13 - 17mm Resistente: ≤ 12 mm
56
Métodos para estudiar la sensibilidad a Ab (2)
Difusión Dilución
57
Métodos de difusión para estudiar resistencia a Ab: (2)
Disco-placa (kirby-bauer) Épsilon test (Etest)
58
¿Qué es el disco-placa (kirby bauer)?
Se colocan puntos con DISTINTOS Antibióticos MISMA concentración (Ab)
59
¿Que es el épsilon test? (Etest)
Se coloca UN MISMO Ab DIFERENTES concentraciones (15 disoluciones)
60
¿Qué se busca con el Etest?
concentración mínima inhibitoria = CMI
61
¿Qué se busca con el disco-placa?
Resistencia a multiples Ab
62
¿Qué se busca estudiar en la dilusión para sensibilidad a Ab?
Concentración mínima inhibitoria (CMI) Concentración mínima bactericida (CMB)
63
¿Qué tipo de cultivo se hace para estudiar el método de dilución para la sensibilidad a antibióticos?
macrodilución en caldo (tubo)
64
¿Qué significa concentración mínima inhibitoria?
Cantidad en la que INHIBIMOS el crecimiento de una bacteria (CMI)
65
¿Qué significa concentración mínima bactericida?
Concentración MÍNIMA en la que MATAMOS a una bacteria
66
Efecto de la concentración mínima inhibitoria en la bacteria (CMI)
Bacteriostática
67
Efecto de la concentración mínima bactericida en la bacteria (CMB)
Bactericida
68
Pasos para la prueba de catalasa: (4)
1. Colocar 1 gota de peróxido de hidrógeno (H2O2) al 3% en un cubreobjetos 2. Con un asa estéril/palillo de madera, tomar una colonia de bacteria 3. Diluir la colonia de bacteria en la gota de peróxido de hidrógeno y mezclar suavemente 4. Esperar de 5-10s para observar los resultados
69
¿Cómo se interpretarían los resultados de una prueba de catalasa? (2)
Presencia de burbujas después dde 5-10s (inmediata) = POSITIVA NO presencia de burbujas = NEGATIVA
70
Pasos para realizar la prueba de coagulasa: (4)
1. Agregar 500 microlitros de plasma en un tubo rotulado 2. Con un asa estéril, tomar una colonia de bacterias 3. Resuspender la colonia de bacterias en el plasma (agitar suavemente) 4. Dejarlo en baño maría mínimo 1 día a 37°C 5. Observar resultados
71
¿Cómo se interpretarían los resultados de la prueba de coagulasa?
Formación de coagulo = POSITIVA NO formación de coágulo = NEGATIVA
72
Tipo de agar utilizado para sembrar hongos:
Sabouraud
73
Tipo de siembra utilizada en hongos:
Siembra en "Y" para una distribución radial
74
Tipos de tinciones utilizadas en hongos: (3)
Azul de algodón KOH Tinta china
75
Azul de algodón (lactofenol) fundamento (3)
Fenol: mata estructuras fúngicas (desinfectante) ácido lactico: preserva estructuras fúngicas (película protectora) Azul de metilo(algodón): adherencia a quitina, las tiñe de azul y las hace visibles bajo el microscopio
76
KOH (hidróxido de potasio) fundamento
Sustancia alcalina que DISUELVE la queratina de la piel (aisla componentes fúngicos) = queratolítico
77
Fundamento de la tinta china:
Agente de exclusión (tinción negativa) = no tiñe el microorganismo en sí, isno que resalta a cápsula (halo) al oscurecer el fondo Se usa en microorganismos con cápsulas muy gruesas. (Carbono coloidal = opaco a la luz)
78
Pasos de la tinción de azul algodón en LEVADURAS:
1. Colocar 1 gota de azul de algodón en portaobjetos 2. Con asa estéril, tomar 1 colonia de levaduras 3. Diluir suavemente el hongo en el azul de algodón 4. Colocar cubreobjetos y observar
79
Pasos de la tinción de azul de algodón en HONGO FILAMENTOSO: (3)
1. Colocar 1 gota de azul de algodón en portaobjetos 2. Con cinta adhesiva, presionar encima del hongo hasta tomar una muestra 3. Colocar la cinta encima del portaobjetos y observar
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